- FLIM, FRET, FCS的交钥匙系统
- 紧凑、易用、免维护的组件,所有的升级系统各个配置都高度模块化,具有无限的灵活性
- 最大4通道独立探测模块的高灵敏系统
- 荧光寿命探测范围从<100 ps到微秒级别
- 高端易用、匹配多种分析方式的数据收集和分析软件
- 可用于各向异性和厚组织FLIM
- 新功能:rapidFLIMHiRes——利用超快FLIM成像和出色的5 ps时间分辨率实现动态过程可视化
激光扫描共聚焦显微镜(LSM)是生物化学,细胞生物学和其他相关生命科学领域中广泛使用的工具。 通过使用时间分辨技术,可以进一步增强这些显微镜的功能,并具有以下优点:
该升级套件作为激光扫描显微镜升级部件,在增强了功能性的基础上,更使整个系统简单易用。作为交钥匙系统,它主要包含三个单元:皮秒脉冲激发源,单分子灵敏度检测器,以及时间相关单光子计数(TCSPC)模块。
机械刺激时的细胞内 Ca2+ 信号传递
装有 Oregon-Green-Bapta-1 的 HEK 细胞受到机械刺激后产生的细胞内 Ca2+ 信号。在这段视频中,对上面两个细胞进行了机械刺激前、刺激过程中和刺激后的成像。机械刺激导致细胞吸收钙离子。Ca2+ 浓度的增加导致 OGB-1 AM 的荧光寿命发生变化,顶部两个细胞在短时间内亮起绿光。rapidFLIMHiRes 方法能够以每秒 5 帧 FLIM 的速度对 128 x 128 像素的样品区域进行成像,从而能够在短时间内定量观察细胞中钙离子浓度的上升。
样品详情:
实验配置:
样本和数据由 Rose 教授(德国杜塞尔多夫海因里希-海涅大学神经生物学研究所)提供
用rapidFLIMHiRes 监测膜张力的变化
这段视频展示了用荧光探针 Fliper-TR®(荧光脂质张量报告)对细胞膜进行染色的 MDCK 细胞。该探针嵌入密闭环境后,荧光寿命会发生显著变化。如果施加横向压力,Fliper-TR® 会发生平面化,从而导致荧光寿命的改变,这就可以对活细胞和人工膜中的脂质成分和膜张力进行成像。在等渗条件下,Fliper-TR® 的荧光寿命约为 5.1 ns。诱导高渗休克后,膜张力迅速降低,荧光寿命缩短。使用 rapidFLIMHiRes 方法进行成像的速度非常快,因此可以实时记录荧光寿命的变化以及膜张力的变化。
样品详情:
实验配置:
参考文献 Colom, A., Derivery, E., Soleimanpour, S. et al. A fluorescent membrane tension probe. Nature Chem 10, 1118-1125 (2018). https://doi.org/10.1038/s41557-018-0127-3
rapidFLIM - 重新定义动态FLIM成像标准
利用rapidFLIM荧光寿命成像技术,可以有效地对样品的多种动态过程进行荧光寿命成像。该技术支持下的FLIM采集过程非常迅捷,可达到每秒几帧的速度,适用于记录样品的动态过程(例如蛋白质相互作用,化学反应和离子流动),以及针对流动性高的样品的进行成像(流动性高的细胞器或颗粒,细胞的迁移等),同时还可以用于研究荧光共振能量转移的动态特性。最高每秒可获取10帧以上,具体取决于样本的亮度和图像大小。
单层囊泡具有从巨型(GUVs)到大型(LUVs)甚至到小型(SUVs)等多种尺寸。囊泡膜的柔性结构允许引入特殊标记的脂质,从而使得它们非常适合在生物物理研究中作为研究对象。因此,这种囊泡成为了研究例如模结构域的形成或脂质组织的强大模型。
到目前为止,传统获取FLIM图像都需要花费几分钟的时间,并且由于GUV的高移动性,很难对它们进行精确成像。应用rapidFLIM方法可显著减少采集时间,每秒可记录数帧。因此,即使是高度移动的GUV,也可以精确跟踪。在该示例中,将两个荧光团标记的脂质(C6-NBD-PC和N-Rhd-DOPE)掺入GUV中。在无相分离的GUV中,由于受体罗丹明的FRET过程,NBD(7-nitrobenz-2-oxa-1,3-diazol-4-yl)的寿命被强烈淬灭(低至约2 ns)。此处显示的视频包含300帧,以5.6 fps的帧率记录。
样品详细:
具有NBD和罗丹明标记的脂质的GUVs(无相分离):DOPC + 0.5 mol % Palmitoyl-C6-NBD-PC + 0.5 mol % N-Rhd-DOPE
NBD标记的Palmitoyl-C6-NBD-PC(磷脂酰胆碱)
罗丹明标记的N-Rhd-DOPE(二油基磷脂酰乙醇胺)
实验配置:
GUV由柏林洪堡大学分子生物物理实验室的Ivan Haralampiev制备
使用荧光寿命确定脂质顺序
FLIM测量有助于区分有序和无序的膜相。在液相有序和无序之间变化时,膜染料Laurdan和di-4-ANEPPDHQ会发生荧光发射光谱蓝移以及的寿命偏移,因此它们可以用来做膜序的成像。这些图像通常采用归一化强度比图像的形式,通常称之为广义极化(GP)图。在这里,通过时间相关单光子计数(TCSPC),利用已知的激发态光物理,可以来证明这两个荧光探针的GP对比度的增强。该图显示了结合了寿命和光谱变化的Laurdan染色的固定BAEC细胞的GP图。与内部细胞室(蓝色)相比,细胞表面的质膜显示出更高的阶数(红色)。
实验配置:
结合了MicroTime 200和LSM升级套件(Leica TCS SP5)
激发光:800 nm的双光子激发,SpectraPhysics MaiTai
分析软件:SymPhoTime
澳大利亚新南威尔士大学血管研究中心Katharina Gaus提供
参考文献:Owen et al., Microsc. Res. Tech. 73(6), (2010)
激发系统 |
激光耦合台,基于皮秒脉冲半导体激光器(功率/重复频率可调, 最大80MHz) 375-900nm波长范围 支持单通道或者多通道驱动 可选:支持外接第三方激光器 (如钛蓝宝石飞秒激光器和超连续谱激光器) 新品:采用LDH-D-TA-560的560 nm皮秒脉冲激发 |
支持显微镜的厂家型号 |
Nikon:AX,A1, C2+, C2, C1si Olympus: FluoView FV3000, FVMPE-RS, FluoView FV1200 (MPE), FluoView FV1000 (MPE) Scientifica:VivoScope, HyperScope Zeiss:LSM 980, LSM 880, LSM 780, LSM 710 |
探测方式 |
最多可支持4通道相互独立的探测模块 共聚焦和NDD配置 通过光纤与显微镜连接 |
探测器 |
单光子雪崩二极管(SPAD) · 混合型光电倍增管(Hybrid-PMT) · 光电倍增管(PMT) |
数据采集方式 |
基于时间相关单光子计数(TCSPC)的TTTR测量模式 · 多达四个通道的同时数据采集 |
采集和软件 |
SymPhoTime 64 NovaFLIM(新增软件) |